一般來(lái)說(shuō)，拷貝數(shù)變異CNV（copy number variant）被定義為人類基因組中1kb或更大的DNA的片段的擴(kuò)增或減少，CNV可以分為拷貝數(shù)擴(kuò)增(copy number gain)和拷貝數(shù)缺失(copy number loss)，在腫瘤細(xì)胞中，往往會(huì)出現(xiàn)原癌基因的擴(kuò)增，抑癌基因的缺失，擴(kuò)增和缺失一般會(huì)直接影響RNA和蛋白的表達(dá)，進(jìn)而影響腫瘤的發(fā)生、發(fā)展，與腫瘤細(xì)胞的生長(zhǎng)、藥物敏感性、耐藥性都密切相關(guān)。有數(shù)據(jù)表明，CNV在人類癌癥基因組中普遍存在，比起單核苷酸多態(tài)性 (SNP) ，CNV影響更大的基因組片段。

基因CNV的檢測(cè)有多種方法，包括Southern印跡雜交、熒光原位雜交（FISH）、聚合酶鏈反應(yīng)（PCR）、比較基因組雜交（CGH）、全基因組單核苷酸多態(tài)性 (SNP) 陣列和NGS等，各有優(yōu)點(diǎn)和缺點(diǎn)。

Fig 1. CNV檢測(cè)技術(shù)比較

今天我們與大家分享一篇NIST（National Institute of Standards and Technology）的文章（點(diǎn)擊即可查看文章內(nèi)容），是他們開發(fā)2373標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的過(guò)程：針對(duì)HER2的gDNA標(biāo)準(zhǔn)品，主要是用于Q-PCR和dPCR的，當(dāng)然也是適用于NGS，但是由于檢測(cè)方法不同、分析方法不同，在定值上會(huì)與Q-PCR和dPCR不一致。

首先文章發(fā)現(xiàn)很多乳腺癌患者的樣本存在大量的染色體結(jié)構(gòu)異常，在開發(fā)Q-PCR和dPCR時(shí)，需要

選擇內(nèi)參基因，內(nèi)參基因的選擇要盡量避開染色體異常的區(qū)域。研究發(fā)現(xiàn)，這些乳腺癌樣本在1q, 8q, 20q, 7, 11q, 13, 17q, 9q ,16p等區(qū)域經(jīng)常發(fā)生基因的擴(kuò)增，在8p, 11q14-qter, 18q, Xq等區(qū)域經(jīng)常發(fā)生基因的缺失，同時(shí)內(nèi)參基因的選擇盡量不能在chr17（HER2基因的位置）上選擇，因此文章最終選擇了DCK基因、EIF5B基因、RPS27A基因和PMM1基因（其中PMM1僅用于Q-PCR實(shí)驗(yàn)）。

Table 1. HER2和內(nèi)參基因的引物信息

Table 2. HER2和內(nèi)參基因的探針信息

作為一個(gè)標(biāo)準(zhǔn)品，需要盡量模擬臨床樣本，同時(shí)需要穩(wěn)定的長(zhǎng)久供應(yīng)，因此文章選擇了5個(gè)常見的乳腺癌細(xì)胞作為標(biāo)準(zhǔn)品的原材料，用于定標(biāo)實(shí)驗(yàn)，分別為：SK-BR-3(components A), MDA-MB-231(components B), MDA-MB-361(components C), MDA-MB-453(components D)和 BT-474(components E)，這些細(xì)胞經(jīng)過(guò)培養(yǎng)，提取gDNA，STR鑒定，確保質(zhì)量合格，備用于接下來(lái)的測(cè)試。

同時(shí)文章構(gòu)建了一個(gè)HER2 cDNA的質(zhì)粒，通過(guò)質(zhì)粒的分子量，計(jì)算得到質(zhì)量與拷貝數(shù)的對(duì)應(yīng)關(guān)系，構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線，同時(shí)引入2372-A樣本（全基因組DNA: gDNA），也構(gòu)建質(zhì)量與拷貝數(shù)的關(guān)系，通過(guò)Q-PCR檢測(cè)，發(fā)現(xiàn)有很強(qiáng)的相關(guān)性，R2=0.9924，進(jìn)而得到2372-A樣本在二倍體時(shí)，對(duì)應(yīng)HER2的拷貝數(shù)為2，進(jìn)而可以用于components A-E的檢測(cè)校準(zhǔn)。

接下來(lái)對(duì)components A-E開展Q-PCR和dPCR的檢測(cè)，Q-PCR采用4種內(nèi)參基因，根據(jù)校正標(biāo)曲計(jì)算得到A-E樣本的copies/μL，dPCR采用3種內(nèi)參基因，同時(shí)計(jì)算A-E樣本的copies/μL和與內(nèi)參基因的比值，在這里，文章中使用了2種dPCR的方法，分別為

droplet dPCR和chamber dPCR。

在計(jì)算上，首先通過(guò)質(zhì)粒HER2 cDNA的Q-PCR數(shù)據(jù)，校正2372-A的gDNA樣本，顯示2372-A樣本二倍體樣本，HER2拷貝為2，再利用2372-A樣本計(jì)算A-E樣本的拷貝數(shù)值（copies/μL），dPCR則直接檢測(cè)HER2和內(nèi)參基因的拷貝數(shù)，進(jìn)而計(jì)算比值。

最終文章顯示首先2種dPCR采用3種內(nèi)參基因，計(jì)算HER2與內(nèi)參基因的比值，結(jié)果有很強(qiáng)的

一致性，5個(gè)樣本出現(xiàn)不同程度的拷貝數(shù)擴(kuò)增，有弱有強(qiáng)。

Fig 2. 針對(duì)A-E樣本，2種dPCR的方法一致性較好。（數(shù)據(jù)為3種內(nèi)參的平均值）

其次A-E樣本在Q-PCR和dPCR上針對(duì)copies/μL也有很強(qiáng)的一致性，表明A-E標(biāo)準(zhǔn)品同時(shí)適用于Q-PCR和dPCR應(yīng)用。

另外文章還檢測(cè)了A-E樣本的穩(wěn)定性，在長(zhǎng)達(dá)856天的測(cè)試中，不管是絕對(duì)的拷貝數(shù)，還是與內(nèi)參的比值，都呈現(xiàn)良好的穩(wěn)定性。

最后文章還測(cè)試了隨機(jī)因素對(duì)A-E實(shí)驗(yàn)的重復(fù)性的影響，比如機(jī)器、操作者、日期等等，呈現(xiàn)良好的重復(fù)性。

綜上可知，在開發(fā)CNV檢測(cè)的分子診斷標(biāo)準(zhǔn)品時(shí)，我們需要注意：

● 可以設(shè)置絕對(duì)的拷貝數(shù)值（copies/μL）作為標(biāo)準(zhǔn)，可以使用dPCR和Q-PCR定標(biāo)，其中Q-PCR需要使用校正標(biāo)曲；

● 可以設(shè)置與內(nèi)參基因的比值，作為標(biāo)準(zhǔn)，適合dPCR的方法（Q-PCR也可以，同樣需要校正標(biāo)曲），這時(shí)需要注意內(nèi)參的選擇原則，如果可以的話，盡量多選擇幾個(gè)內(nèi)參基因；

● 標(biāo)準(zhǔn)品需要穩(wěn)定供應(yīng)，需要測(cè)試長(zhǎng)久的穩(wěn)定性，測(cè)試在不同的隨機(jī)因素下的重復(fù)性；

但是我們發(fā)現(xiàn)還是有一些問(wèn)題沒(méi)有解決，比如：Q-PCR和dPCR都是很短序列的PCR反應(yīng)，在整個(gè)HER2基因的什么

區(qū)段選擇擴(kuò)增？不同區(qū)段的擴(kuò)增效率會(huì)直接影響拷貝數(shù)值（copies/μL），進(jìn)而不同區(qū)段檢測(cè)得到的拷貝數(shù)與內(nèi)參基因的比值也會(huì)不一致，甚至是否會(huì)出現(xiàn)PCR反應(yīng)正好設(shè)計(jì)在各個(gè)拷貝的差異處，就不僅僅是擴(kuò)增效率的問(wèn)題了。

另外在文章之外，我們可以

探討下：這個(gè)標(biāo)準(zhǔn)品是否適用于NGS？我們知道NGS是比較各處的測(cè)序深度，進(jìn)而判斷區(qū)域的拷貝數(shù)，與Q-PCR和dPCR的檢測(cè)方法差異很大，看起來(lái)NGS會(huì)檢測(cè)到不一樣的結(jié)果。