細胞株的核型分析實驗操作研究：

　　進行該實驗的所需材料有：姬姆色素染料；秋水仙素；甲醇；冰乙酸；KCL；0.25%胰酶。

　　實驗儀器包括顯微鏡、二氧化碳培養箱、水浴鍋、烘箱等。

　　具體實驗步驟如下：

　　將傳代的細胞密度調整為1*105/ml，接種于1個10cm培養皿，置于37℃，5%CO2培養箱中培養，約培養48小時后，加秋水仙素（終濃度為0.2ug/ml），搖勻后37℃孵育1-2h。

　　將培養的細胞用胰酶消化收集到10ml離心管中，1000轉/分，離心10分鐘，去除上清液，留500ul,先將底部細胞吹勻，加入8ml 37℃預溫的0.075M KCL(37℃提前水浴)，打勻后放37℃水浴箱40min，加入新鮮配制的固定液（甲醇/冰乙酸=2/1-3/1）2ml地混勻，室溫下放10min后，1000轉/分離心10min，去上清液，留500ul,先將底部細胞吹勻，新加入8ml固定液，離心清洗、重復三次后、滴片，放入60℃烘箱老化6小時（過夜）；再將烤干的玻片放入胰酶（0.25%）中消化1min左右后，再放入吉姆薩染液中染色5-6min，取出用流水沖去染液后，在顯微鏡下觀察結果。

　　相關實驗注意事項：

　　1.滴片的載玻片需預先泡酸處理；

　　2.低滲溶液要用無菌水配制；

　　3.低滲溶液，胰酶需要提前預熱；

　　4.固定液、胰酶、吉姆薩染色液需現配現用。

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